RT-qPCR的引物获取有时就这么简单
灵敏的PCR反应,决定于所使用引物的特异性。特别是用于定量分析的基于Sybr green染料的 RT-qPCR,引物更是重中之重。初学者在师兄师姐们带领下学习理解RT-qPCR技术时,可能更多是关注数据分析结果展示之类,而对引物的重要性认识不够;在认识到引物的重要后,又往往去找各种引物设计软件或是网上数据库的使用教程,期以知道如何设计和获取qPCR引物。
实际上,笔者认为,在2018年的今天,如果我们检测的基因不是太新颖,我们也不用真的去关心引物的设计原则。
根据经验,笔者推荐如下的顺序进行qPCR引物获取。
所需材料:
1、 一台连网电脑
2、 可以上google
初级:直接获取
优点:退火温度统一为60,适合二步法,节约时间。
缺点:物种只有人和小鼠。
在直接获取方面,一般人会是想到的是Primerbank、GETPrime、qPrimerDB、RTPrimerDB之类由学术界提供的网上数据库。这是一个很好的方法,很多公众号也在进行介绍,不少实验室的人也是这么做的。我个人认为,生物公司要提供的会比由学术界预测收集的要好一些。只是大部分提供RT-qPCR引物的公司,并不会主动提供引物序列消息。但总有例外,比如http://www.origene.com.cn/qPCR/primers.aspx,就会免费提供人和小鼠常见基因的RT-qPCR引物序列。下面以人的IFNG基因为例,在打开的网页上直接输入“IFNG”,并点击GO。
得到引物序列后,可以在Primerblast(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/)进行验证。
更有趣的是,把这个序列在Google上搜索,得到85条结果
简单看一下,还会发现找到的一些文章中有不少与IFNG研究相近的基因引物。点击打开第一篇文章
可以在文章中发现同时有IL-10的引物。如果是用人的PBMC作为实验材料的人,可以直接使用这些引物了。
进阶篇:建立个性化RT-qPCR引物数据库
网络上的引物千千万,文章中的序列数不清,但我们真正需要的只是能在我们实验条件下能work的一条。而我们的实验条件包括实验材料(细胞系或原代细胞或组织)、实验条件(退火温度)。基于此,有必要建立起个性化的RT-qPCR引物数据库。比如,以上的“HPRT Forward primer 5′-GAACGTCTTGCTCGAGATGTG-3′ and reverse primer 5′-CCAGCAGGTCAGCAAAGAATT-3′。在Google中可以找到很多附件,里面就是包括了不少引物序列。而我们要做的是,下载其中的附件,对引物进行评价,并按下表建立起个性化的数据库。另外也可以收集平时看到的文章中的序列,并记录下基中RNA来源,所用试剂和反应条件等信息建库。在进行实验时,在个性化数据库中找到最符合自己实验条件的那条序列。
弱水三千,只取一瓢,引物也是适合的才是最好。
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备注:入群学习
从以下20个热点入手,每天给大家分享干货:
1 | miRNA非经典机制 | 11 | 肠道菌群 |
2 | lncRNA的10种机制 | 12 | 细胞自噬 |
3 | circRNA | 13 | 细胞焦亡、铁死亡 |
4 | ceRNA | 14 | 间充质干细胞 |
5 | 转录因子 | 15 | 肿瘤干细胞 |
6 | 可变剪接 | 16 | 外泌体 |
7 | SNP | 17 | 氧化应激 |
8 | 泛素化修饰 | 18 | 调节性T细胞 |
9 | 组蛋白修饰 | 19 | RNA甲基化修饰 |
10 | 蛋白激酶和磷酸酶 | 20 | 肿瘤微环境 |
而这些研究方向参与疾病发生发展过程的分子机制,可以归纳总结为一下几类研究:
①分子(DNA、RNA、蛋白质、小分子)的表观遗传修饰;
②分子拷贝数的表达变化差异;
③RNA分子的剪接加工、出核、细胞组织水平的时空变化研究;
④特殊的一群细胞类型研究、细胞通讯微环境研究;
⑤具有临床应用潜力的新技术(CRIPSR)或者载体(膜结构、细胞等);
⑥关注细胞生理学现象:自噬、凋亡、线粒体失功等;
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